我們今天來分析ELISA試劑中相關結合物的問題，這是昨天下午一個來自上海的老師提出來的，做酶標記抗體的制備，要說方法主要的來看一共是有兩種。RD試劑盒說明結合物的制法與保存，下面我們來細致的了解一下。
    我們剛才說到了主要的兩種方法，先來看*種，戊二醛交聯法。        
    戊二醛是一種雙功能團試劑，它可以使酶與蛋白質的氨基通過它而聯結。堿性磷酸一般用此法進行標記。交聯方法一步法、兩步法兩種。在一步法中戊 二醛直接加入酶與抗體的混合物中，反應后即得酶標記抗體。ELISA中常用的酶一般都用此法交聯。它具有操作簡便、有效（結合率達60%-70%）和重復性好等優點。缺點是交聯反應是隨機的，酶與抗體交聯時分子間的比例不嚴格，結 合物的大小也不均一，酶與酶，抗體與抗體之間也有可能交聯，影響效果。在兩步法中，先將酶與戊二醛作用，透析除去多余的戊二醛后，再與抗體作用而形成酶標抗體。也可先 將抗體與戊二醛作用，再與酶聯結。兩步法的產物中絕大部分的酶與蛋白質是以1:1的比 例結合的，較一步法的酶結合物更有助于本底的改善以提高敏感度，但其偶聯的有效率較 一步法低。 
    方法二：過碘酸鹽氧化法
    本法只適用于含糖量較高的酶。辣根過氧化物酶的標記常用此法。反應時，過碘酸鈉將HRP分子表面的多糖氧化為醛基很活潑，可與蛋白質上的氨基形成Schiff氏堿而結合。酶標記物按克分子比例聯結，在這上海恒遠生物說明一下，的比例是：酶/抗體=1-2/1。此法簡便有效，一般認為是HRPzui可取的標記方法，但也有人認為所有試劑較為強烈，各批實驗結果不易重演。  
    看完了兩種制法之后，我們來進一步的分析，理論上，結合物中混有的游離酶一般不影響ELISA中zui后的酶活性測定，因經過*洗滌，游離酶可被除去，并不影響zui終的顯色。但游離的抗體則不同，它會與酶標抗體競爭相應的固相抗原，從而減少了結合到固相上的酶標抗體的量。因此制備的酶結合物應予純化，去除游離的酶和抗體后用于檢測，效果更好。純化的方法很多，分離大分子化合物的方法均可應用。硫酸銨鹽析法zui為簡便，但效果并不理想，因為此法只能去除留在上清中的游離酶，但相當數量的游離抗體仍與酶結合物一起沉淀而不能分開。
    用離子交換層析或分子篩分離更為可取，液相層析法可將制備的結合物清晰地分成三個部分：游離酶、游離抗體和純結合物而取得*的分離效果，但費用較貴。 
    結合物制得后，在用作ELISA試劑前尚需確定其適當的工作濃度。使用過濃的結合物，既不經濟，又可使本底增高；結合物的濃度過低，則又影響檢測的敏感性。所以必須對結合物的濃度予以選擇。zui適的工作濃度就是指結合物稀釋至這一濃度時，能維護一個低的本底，并獲得測定的*靈敏度，達到zui合適的測定條件和測定費用的節省。就酶標抗體本身而言，它的有效工作濃度是指與其相應抗原包被的載體作試驗時，能得到陽性反應的zui高稀釋度。上海恒遠生物給您舉個例子吧，我們比如說某一HRP：抗人IgG制劑標明的工作濃度1:5000，表示該制劑經1:5000稀釋后，在與人IgG包被的固相作ELISA試驗時，將發生陽性反應。但在用于具體的ELISA檢測中，酶標抗體的zui適工作濃度受到固相載體的性質、包被抗原或抗體的純度以及整個檢測系統如標本、反應溫度和時間等的影響，因此必須在實際測定條件下進行“滴配”選擇能達到高敏感度的zui大稀釋度作為試劑盒中的工作濃度。 
結合物的保存 
    酶標抗體中的酶和抗體均為生物活性物質，保存不當，極易失活。高濃度的結合物較為穩定，冰凍干燥后可在普通冰箱中保存一年左右，但凍干過程中引起活力的減低，而且使用時需經復溶，頗為不便。結合物溶液中加入等體積的甘油可在低溫冰箱或普通冰箱的冰格中較長時間保存。早期的ELISA試劑盒中的結合物一般均按以上兩種形式供應，配以稀釋液臨用時按標明的稀釋度稀釋成工作液。現在較先進的ELISA試劑盒均已用合適的緩沖液配成工作液，使用時不需再行稀釋，在4-8℃保存期可達6個月。由于蛋白質濃度較低，結合物易失活，需加入蛋白保護劑。另外再加入抗生素和防腐劑，以防止細菌生長。 
    到這里本文就基本結束了，上海恒遠生物是專業供應RD試劑盒的，您在其中有疑問都可以來電給我公司何，我們公司的技術人員來為您探討分析。